培养条件:
气相:95%空气 + 5%二氧化碳;
温度:37℃;
培养基:MEM + 10% FBS + 1% P/S。
传代方法:
第一次建议传代比率为1:2。
培养观察:
每两天更换培养液,确保细胞能在良好的生长状态下运行。
细胞处理步骤:
收到细胞后,用75%酒精喷洒瓶外进行消毒,并在超净台上进行无菌操作。将细胞瓶放入37℃、5% CO2的培养箱中静置3-4小时以稳定细胞状态,然后可以开始处理。
细胞观察:
使用显微镜观察细胞的生长情况,并拍摄不同倍数(建议40x, 100x, 200x)的照片以保存。如果前三天未提供照片,则视为已收到良好状态的细胞。
细胞传代:
如果细胞的汇合度未超过80%,则需将培养基收集至离心管中,保留5ml完全培养基,于37℃、5% CO2条件下培养;若细胞密度超过80%,则立即进行传代。
细胞传代步骤:
1. 弃去培养基,使用不含钙、镁的PBS冲洗细胞1-2次。
2. 添加0.25%胰蛋白酶消化液约1-2ml,放入37℃培养箱中消化1-2分钟,观察细胞状态。若细胞大多数变圆并脱落,立刻加入5ml完全培养基终止消化。
3. 轻轻吹打细胞,使其完全脱落后,将悬液转移至15ml离心管中,在1000 RPM下离心5分钟,弃去上清液,添加1-2ml完全培养基重悬细胞。
4. 将细胞悬液按1:2的比例分瓶传代,补充新的完全培养基至5-8ml/瓶,最后放入到37℃、5% CO2的培养箱中。
细胞冻存步骤:
在细胞达到80%融合时,弃去培养液,用PBS清洗;随后添加0.25%胰蛋白酶进行消化,观察细胞状态,消化后重悬细胞,转移至离心管中进行离心。
加入无血清冻存液后,混匀并分装入冻存管中。
将冻存细胞直接放入-80℃冰箱保存,若要转入液氮罐,需在-80℃下放置超过24小时后再转入液氮。
细胞复苏步骤:
从液氮中取出细胞冻存管,迅速放入37℃水浴中解冻,随后将细胞转移至含5ml完全培养基的离心管中,进行离心后重悬,再接种至培养瓶中培养。
注意事项:
在运输过程中,部分细胞可能会脱落,这是正常现象。如脱落严重,请收集培养液并离心处理,按照步骤重悬细胞后完成传代。
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